Analysis of the composition of certain phenolic carboxylic acids and terpenes in Juniperus communis L. fruits and needles by gas and liquid chromatography-mass spectrometry

封面

如何引用文章

全文:

开放存取 开放存取
受限制的访问 ##reader.subscriptionAccessGranted##
受限制的访问 订阅或者付费存取

详细

Common juniper (Juniperus communis L., Cupressaceae family) is a promising source of biologically active compounds for the treatment and prevention of chronic diseases. Extracts of juniper needles and fruits were analyzed using high-resolution HPLC-MS and GC-MS with thermal desorption (TD). Six hydroxybenzoic acids and four hydroxycinnamic acids were identified on chromatograms obtained in full-scan mode. The content of salicylic, p-hydroxybenzoic, gallic, coumaric, and ferulic acids was estimated at 0.03–17 mg/L. In TD-GC-MS mode, peaks of compounds were recorded in the retention time range of 9–25 minutes (retention indices from 900 to 1700). For more reliable identification, experimental retention indices were calculated and compared with literature values. It was suggested that the presence of compounds such as cosmene, pinocarveol, and 2-pinene-4-one in chromatograms may serve as markers of juniper fruit presence in needle-based dietary supplements.

作者简介

A. Ermakov

Sechenov First Moscow State Medical University, Ministry of Health of the Russian Federation

Email: Pirogovav@my.msu.ru
Moscow, Russia

N. Bobkova

Sechenov First Moscow State Medical University, Ministry of Health of the Russian Federation

Email: Pirogovav@my.msu.ru
Moscow, Russia

O. Nesterova

Sechenov First Moscow State Medical University, Ministry of Health of the Russian Federation

Email: Pirogovav@my.msu.ru
Moscow, Russia

G. Nesterov

Sechenov First Moscow State Medical University, Ministry of Health of the Russian Federation

Email: Pirogovav@my.msu.ru
Moscow, Russia

A. Pirogov

Department of Chemistry, Lomonosov Moscow State University

Email: Pirogovav@my.msu.ru
Moscow, Russia

E. Chichkanova

Department of Chemistry, Lomonosov Moscow State University

Email: Pirogovav@my.msu.ru
Moscow, Russia

I. Ananyeva

Department of Chemistry, Lomonosov Moscow State University

Email: Pirogovav@my.msu.ru
Moscow, Russia

D. Prosuntsova

Department of Chemistry, Lomonosov Moscow State University

Email: Pirogovav@my.msu.ru
Moscow, Russia

A. Kuzmenko

Russian State Social University

编辑信件的主要联系方式.
Email: Pirogovav@my.msu.ru
Moscow, Russia

参考

  1. Соколов С.Я., Связева О.А., Кубли В.А., Скворцов А.К., Грудзинская И.А., Огуреева Г.Н. Ареалы деревьев и кустарников в СССР. Л.: Наука. Ленинградское отделение, 1977. Т. 1. C. 164.
  2. Кароматов И.Д., Давлатова М.С. Можжевельник в народной и научной медицине. // Электронный научный журнал “Биология и интегративная медицина”. 2018. Т. 18. № 1. C. 87.
  3. Miceli N., Trovato A., Dugo P., Cacciola F., Donato P., Marino A., Bellinghieri V., La Barbera T.M., Güvenç A., Taviano M.F. Comparative analysis of flavonoid profile, antioxidant and antimicrobial activity of the berries of Juniperus communis L. var. communis and Juniperus communis L. var. saxatilis Pall. from Turkey // J. Agric. Food Chem. 2009. V. 57. № 15. P. 6570. https://doi.org/10.1021/jf9012295
  4. Belov T., Terenzhev D., Bushmeleva K.N., Davydova L., Burkin K., Fitsev I., Gatiyatullina A., Egorova A., Nikitin E. Comparative analysis of chemical profile and biological activity of Juniperus communis L. berry extracts // Plants. 2023. V. 12. № 19. 3401. https://doi.org/10.3390/plants12193401
  5. Hrytsyna M., Salamon I., Peleno R., Vargova V. Identification and analysis of the content of biologically active substances of juniper cone berries and their antioxidant activity // Horticulturae. 2024. V. 10. № 12. 1237. https://doi.org/10.3390/horticulturae10121237
  6. Селиванова Н.В., Пустынная М.А., Гусакова М.А., Боголицын К.Г. Характеристика биологически активных соединений коры Juniperus communis (Cupressaceae) // Растительные ресурсы. 2024. Т. 60. № 1. C. 94. https://doi.org/10.31857/S0033994624010064
  7. Wafa S. Zubi., Asma A. Elamari, Nawal M. Buzgaia. Antimicrobial activity and bioactive compounds of Juniper phoenicea: A mini review // EC Microbiol. 2025. V. 21. № 3. P. 1.
  8. Höferl M., Stoilova I.S., Wanner J., Jirovetz L., Trifonova D., Krastev L., Stoyanova A.S., Krastanov A.I. Chemical composition and antioxidant properties of juniper berry [Juniperus communis L.] essential oil // Bulg. J. Agric. Sci. 2014. V. 20. № 2. P. 227. https://doi.org/10.3390/antiox3010081
  9. Angioni B.A., Russo M.T., Coroneo V., Dessi S., Cabras P. Chemical composition of the essential oils of Juniperus from ripe and unripe berries and leaves and their antimicrobial activity // J. Agric. Food Chem. 2003. V. 51. P. 3073. https://doi.org/10.1021/jf026203j
  10. Новиков О.О., Писарев Д.И., Корниенко И.В., Титарева Л.В., Гурьев И.В. Исследование эфирного масла шишкоягод Juniperus commúnis, различного происхождения в рамках научного направления “Фармацевтический ремейк” // Научный результат. Сер. Медицина и фармация. 2016. Т. 2. № 2. С. 27. https://doi.org/10.18413/2313-8955-2016-2-2-27-36
  11. Корниенко И.В., Новиков О.О., Писарев Д.И., Малютина А.Ю. Сравнительный химический анализ эфирного масла шишкоягод Juniperus commúnis из разных регионов Российской Федерации // Научный результат. Сер. Медицина и фармация. 2015. Т. 1. № 3. C. 80. https://doi.org/10.18413/2313-8955-2015-1-3-80-88
  12. Маркова Е.С., Пирогов А.В., Садовникова А.А., Попик М.В., Шпигун О.А. Cорбция нефтяных веществ на поверхности углеродного монолита и последующее их определение методом ГХ/ГХ/МС // Вестн. Моск. ун-та. Сер. 2. Химия. 2022. Т. 63. № 2. С. 125.
  13. Маркова Е.С., Фурман А.Н., Шехтман С.П., Пирогов А.В., Попик М.В., Шпигун О.А., Степашкин А.А. Пассивная сорбция ароматичных веществ на композиционном материале из карбида кремния и бутадиен-нитрильного каучука и сравнение хроматографических профилей банановых конфет, свежих бананов и ароматизатора “Банан” // Журн. аналит. химии. 2023. Т. 78. № 1. С. 48. https://doi.org/10.31857/S0044450223010073 (Markova E.S., Furman A.N., Shekhtman S.P., Pirogov A.V., Popik M.V., Shpigun O.A., Stepashkin A.A. Passive adsorption of aromatic substances on silicon carbide and nitrile rubber composites and a comparison of the chromatographic profiles of banana candy, fresh banana, and “Banana” flavor // J. Anal. Chem. 2023. V. 78. № 1. Р. 68. https://doi.org/10.1134/S1061934823010070
  14. Zhang L., Li Y., Liang Y., Liang K., Zhang F., Xu T., Wang M., Song H., Liu X., Lu B. Determination of phenolic acid profiles by HPLC-MS in vegetables commonly consumed in China // Food Chem. 2019. V. 276. P. 538. https://doi.org/10.1016/j.fochx.2022.100426
  15. Whetten R., Sederoff R. Lignin biosynthesis // Plant Cell. 1995. V. 7. № 7. P. 1001. https://doi.org/10.1105/tpc.7.7.1001
  16. Антонова Г.Ф., Вараксина Т.Н. Железниченко Т.В., Стасова В.В. Изменение фенолкарбоновых кислот в ходе созревания и лигнификации клеток ксилемы сосны обыкновенной // Онтогенез. 2012. Т. 43. № 4. C. 250.
  17. Заславская А.А., Дмитрук В.И., Злобинец А.С. Использование ароматерапии для лечения и профилактики острых респираторных заболеваний у детей // Актуальная инфектология. 2017. Т. 5. № 2. С. 101. https://doi.org/10.22141/2312-413x.5.2.2017.105323
  18. Буренина И.А. Основные методологические принципы применения ароматерапии в восстановительном лечении // Вестник современной клинической медицины. 2009. Т. 2. №. 2. С. 47.
  19. Ancel J.E., Maksimchuk N.V., Simakova I.L., Semikolenov V.A. Kinetic peculiarities of α-pinene oxidation by molecular oxygen // Appl. Catal. A: Gen. 2004. V. 272. № 1–2. P. 109. https://doi.org/10.1016/j.apcata.2004.05.020

补充文件

附件文件
动作
1. JATS XML
下载

版权所有 © Russian Academy of Sciences, 2025