Локализованная база GTEx и ее возможное применение в биомедицинских исследованиях
- Авторы: Чураков Г.А.1,2, Беляков М.Д.3, Салль Т.С.1, Орлов С.В.1,3
-
Учреждения:
- Институт экспериментальной медицины
- Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет
- Санкт-Петербургский государственный университет
- Выпуск: Том 59, № 5 (2025)
- Страницы: 768-792
- Раздел: ГЕНОМИКА. ТРАНСКРИПТОМИКА
- URL: https://genescells.com/0026-8984/article/view/696387
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0026898425050048
- ID: 696387
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Эффективный анализ больших объемов транскриптомных данных требует быстрого и простого доступа к исходным данным определения экспрессии генов. В нашей работе локализованы данные, полученные при изучении экспрессии более 50000 генов в 54 тканях примерно у 1000 человек из системы GTEx, создан простой в работе интерфейс доступа, отбора и фильтрации этих данных. Пользуясь возможностями локализованной системы, мы отобрали cемь генов “домашнего хозяйства” с высокой стабильностью экспрессии, исследовали изменение количества и активности тучных клеток в большеберцовой артерии при старении, изучили изменения компонентов кишечного барьера и состояния мукозального иммунитета в пожилом возрасте в связи с повышенной частотой встречаемости язвенного колита после 60 лет. Показана применимость локализованной базы GTEx в различных биологических и медицинских проектах и исследованиях.
Об авторах
Г. А. Чураков
Институт экспериментальной медицины; Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университетСанкт-Петербург, 197022 Россия; Санкт-Петербург, 194100 Россия
М. Д. Беляков
Санкт-Петербургский государственный университетСанкт-Петербург, 199034 Россия
Т. С. Салль
Институт экспериментальной медициныСанкт-Петербург, 197022 Россия
С. В. Орлов
Институт экспериментальной медицины; Санкт-Петербургский государственный университет
Email: serge@iem.spb.ru
Санкт-Петербург, 197022 Россия; Санкт-Петербург, 199034 Россия
Список литературы
- Lonsdale J., Thomas J., Salvatore M., Phillips R., Lo E., Shad S., Hasz R., Walters G., Garcia F., Young N., Foster B., Moser M., Karasik E., Gillard B., Ramsey K., Sullivan S., Bridge J., Magazine H., Syron J., Fleming J., Siminoff L., Traino H., Mosavel M., Barker L., Jewell S., Rohrer D., Maxim D., Filkins D., Harbach P., Cortadillo E., Berghuis B., Turner L., Hudson E., Feenstra K., Sobin L., Robb J., Branton R, Korzeniewski K., Shive C., Tabor D., Qi L., Groch K., Nampally S., Buia S., Zimmerman A., Smith A., Burges R., Robinson K., Valentino K., Bradbury D., Cosentino M., Diaz-Mayoral N., Kennedy M., Engel T., Williams P., Erickson K., Ardlie K., Winckler W., Getz G., DeLuca D., Daniel MacArthur D., Kellis M., Thomson A., Young T., Gelfand E., Donovan M., Grant G., Mash D., Marcus Y., Basile M., Liu J., Zhu J., Tu Z., Cox N.J., Nicolae D.L., Gamazon E.R, Kyung H., Konkashbaev A., Pritchard J., Stevens M., Flutre T., Wen X., Dermitzakis T., Lappalainen T., Guigo R., Monlong J., Sammeth M., Koller D., Battle A., Mostafavi S., McCarthy M., Rivas M., Maller J., Rusyn I., Nobel A., Wright F., Shabalin A., Feolo M., Sharopova N., Sturcke A., Paschal J., Anderson J.M., Wilder E.L., Derr L.K., Green E.D., Struewing J.P., Temple G., Volpi S., Boyer J.T., Thomson E.J., Guyer M.S., Ng C., Abdallah A., Colantuoni D., Insel T.R., Koester S.E., Little A.R., Bender P.K, Lehner T., Yao Y., Compton C.C, Vaught J.B, Sawyer S., Lockhart N.C., Demchok J., Moore H.F. (2013) The genotype-tissue expression (GTEx) project. Nat. Genet. 45(6), 580–585. https://doi.org/10.1038/ng.2653
- Jacob F., Guertler R., Naim S., Nixdorf S., Fedier A., Hacker N.F., Heinzelmann-Schwarz V. (2013) Careful selection of reference genes is required for reliable performance of RT-qPCR in human normal and cancer cell lines. PLoS One. 8(3), e59180. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0059180
- Nevone A., Lattarulo F., Russo M., Panno G., Milani P., Basset M., Avanzini M.A., Merlini G., Palladini G., Nuvolone M. (2023) A strategy for the selection of RT-qPCR reference genes based on publicly available transcriptomic datasets. Biomedicines. 11(4), 1079. https://doi.org/10.3390/biomedicines11041079
- Gorji-Bahri G., Moradtabrizi N., Vakhshiteh F., Hashemi A. (2021) Validation of common reference genes stability in exosomal mRNA-isolated from liver and breast cancer cell lines. Cell Biol. Int. 45(5), 1098–1110. https://doi.org/10.1002/cbin.11556
- Molina C., Jacquet E., Ponien P., Muñoz-Guijosa C., Baczkó I., Maier L.S., Donzeau-Gouge P., Dobrev D., Fischmeister R., Garnier A. (2017) Identification of optimal reference genes for transcriptomic analyses in normal and diseased human heart. Cardiovasc. Res. 114(2), 247–258. https://doi.org/10.1093/cvr/cvx182
- Fowkes F.G.R., Rudan D., Rudan D., Aboyans V., Denenberg J.O., McDermott M.M., Norman P.E., Sampson U.K.A., Williams L.J., Mensah G.A., Criqui M.H. (2013) Comparison of global estimates of prevalence and risk factors for peripheral artery disease in 2000 and 2010: a systematic review and analysis. Lancet. 382(9901), 1329–1340. https://doi.org/10.1016/s0140-6736(13)61249-0
- Slysz J., Sinha A., DeBerge M., Singh S., Avgousti H., Lee I., Glinton K., Nagasaka R., Dalal P., Alexandria S., Wai C.M., Tellez R., Vescovo M., Sunderraj A., Wang X., Schipma M., Sisk R., Gulati R, Vallejo J., Saigusa R., Lloyd-Jones D.M., Lomasney J., Weinberg S., Ho K., Ley K., Giannarelli C., Thorp E.B., Feinstein M.J. (2023) Single-cell profiling reveals inflammatory polarization of human carotid versus femoral plaque leukocytes. JCI Insight. 8(17), e171359. https://doi.org/10.1172/jci.insight.171359
- Elieh-Ali-Komi D., Bot I., Rodríguez-González M., Maurer M. (2024) Cellular and molecular mechanisms of mast cells in atherosclerotic plaque progression and destabilization. Clinic. Rev. Allerg. Immunol. 66(1), 30–49. https://doi.org/10.1007/s12016-024-08981-9
- Sovran B., Hugenholtz F., Elderman M., Van Beek A.A., Graversen K., Huijskes M., Boekschoten M.V., Savelkoul H.F.J., De Vos P., Dekker J., Wells J.M. (2019) Age-associated impairment of the mucus barrier function is associated with profound changes in microbiota and immunity. Sci. Rep. 9(1), 1437. https://doi.org/10.1038/s41598-018-35228-3
- Князев О.В., Шкурко Т.В., Каграманова А.В., Веселов А.В., Никонов Е.Л. (2020) Эпидемиология воспалительных заболеваний кишечника. Современное состояние проблемы (обзор литературы). Доказательная гастроэнтерология. 9(2), 66–73. https://doi.org/10.17116/dokgastro2020902166
- Holm S. (1979) A simple sequentially rejective multiple test procedure. Scandinavian J. Statistics. 6(2), 65–70. http://www.jstor.org/stable/4615733
- Ramel D., Gayral S., Sarthou M.K., Augé N., Nègre-Salvayre A., Laffargue M. (2019) Immune and smooth muscle cells interactions in atherosclerosis: how to target a breaking bad dialogue? Front. Pharmacol. 10, 1276. https://doi.org/10.3389/fphar.2019.01276
- Halova I., Draberova L., Draber P. (2012) Mast cell chemotaxis – chemoattractants and signaling pathways. Front. Immunol. 3, 119. https://doi.org/10.3389/fimmu.2012.00119
- Gonzalez-Quesada C., Frangogiannis N.G. (2009) Monocyte chemoattractant protein-1/CCL2 as a biomarker in acute coronary syndromes. Curr. Atheroscler. Rep. 11, 131–138. https://doi.org/10.1007/s11883-009-0021-y
- Inadera H., Egashira K., Takemoto M., Ouchi Y., Matsushima K. (1999) Increase in circulating levels of monocyte chemoattractant protein-1 with aging. J. Interferon Cytokine Res. 19(10), 1179–1182. https://doi.org/10.3389/fimmu.2012.00119
- Bais K., Kumari R., Prashar Y., Gill N.S. (2017) Review of various molecular targets on mast cells and its relation to obesity: a future perspective. Diabetes Metab. Syndr. 11(S2), S1001–S1007. https://doi.org/10.1016/j.dsx.2017.07.029
- Koelman L., Pivovarova-Ramich O., Pfeiffer A.F.H., Grune T., Aleksandrova K. (2019) Cytokines for evaluation of chronic inflammatory status in ageing research: reliability and phenotypic characterisation. Immun. Ageing. 16, 11. https://doi.org/10.1186/s12979-019-0151-1
- Marchini T., Mitre L.S., Wolf D. (2021) Inflammatory cell recruitment in cardiovascular disease. Front. Cell. Dev. Biol. 9, 635527. https://doi.org/10.3389/fcell.2021.635527
- Oldford S.A., Salsman S.P., Portales-Cervantes L., Alyazidi R., Anderson R., Haidl I.D., Marshall J.S. (2018) Interferon α2 and interferon γ induce the degranulation independent production of VEGF-A and IL-1 receptor antagonist and other mediators from human mast cells. Immun. Inflamm. Dis. 6(1), 176–189. https://doi.org/10.1002/iid3.211
- Золотова Н.А., Архиева Х.М., Зайратьянц О.В. (2019) Эпителиальный барьер толстой кишки в норме и при язвенном колите. Эксперим. и клин. гастроэнтерол. 162(2), 4–13. https://doi.org/10.31146/1682-8658-ecg-162-2-4-13
- Grondin J.A., Kwon Y.H., Far P.M., Haq S., Khan W.I. (2020) Mucins in intestinal mucosal defense and inflammation: learning from clinical and experimental studies. Front. Immunol. 11, 2054. https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.02054
- Leoncini G., Cari L., Ronchetti S., Donato F., Caruso L., Calafà C., Villanacci V. (2024) Mucin expression profiles in ulcerative colitis: new insights on the histological mucosal healing. Int. J. Mol. Sci. 25(3), 1858. https://doi.org/10.3390/ijms25031858
- Sang X., Wang Q., Ning Y., Wang H., Zhang R., Li Y., Fang B., Lv C., Zhang Y., Wang X., Ren F. (2023) Age-related mucus barrier dysfunction in mice is related to the changes in Muc2 mucin in the colon. Nutrients. 15(8), 1830. https://doi.org/10.3390/nu15081830
- Baidoo N., Sanger G.J. (2024) Age-related decline in goblet cell numbers and mucin content of the human colon: implications for lower bowel functions in the elderly. Exp. Mol. Pathol. 139, 104923. https://doi.org/10.1016/j.yexmp.2024.104923
- Sheng Y.H., Triyana S., Wang R., Das I., Gerloff K., Florin T.H., Sutton P., McGuckin M.A. (2013) MUC1 and MUC13 differentially regulate epithelial inflammation in response to inflammatory and infectious stimuli. Mucosal Immunol. 6(3), 557–568. https://doi.org/10.1038/mi.2012.98
- Kononova S., Litvinova E., Vakhitov T., Skalinskay M., Sitkin S. (2021) Acceptive immunity: the role of fucosylated glycans in human host–microbiome interactions. Int. J. Mol. Sci. 22(8), 3854. https://doi.org/10.3390/ijms22083854
- Nason R., Büll C., Konstantinidi A., Sun L., Ye Z., Halim A., Du W., Sørensen D.M., Durbesson F., Furukawa S., Mandel U., Joshi H.J., Dworkin L.A., Hansen L., David L., Iverson T.M., Bensing B.A., Sullam P.M., Varki A., Vries E., de Haan C.A.M., Vincentelli R., Henrissat B., Vakhrushev S.Y., Clausen H., Narimatsu Y. (2021) Display of the human mucinome with defined O-glycans by gene engineered cells. Nat. Commun. 12(1), 4070. https://doi.org/10.1038/s41467-021-24366-4
- van der Post S., Jabbar K.S., Birchenough G., Arike L., Akhtar N., Sjovall H., Johansson M.E.V., Hansson G.C. (2019) Structural weakening of the colonic mucus barrier is an early event in ulcerative colitis pathogenesis. Gut. 68(12), 2142–2151. https://doi.org/10.1136/gutjnl-2018-317571
- Capaldo C.T., Farkas A.E., Hilgarth R.S., Krug S.M., Wolf M.F., Benedik J.K., Fromm M., Koval M., Parkos C., Nusrat A. (2014) Proinflammatory cytokine-induced tight junction remodeling through dynamic self-assembly of claudins. Mol. Biol. Cell. 25(18), 2710–2719. https://doi.org/10.1091/mbc.E14-02-0773
- Zhu L., Han J., Li L., Wang Y., Li Y., Zhang S. (2019) Claudin family participates in the pathogenesis of inflammatory bowel diseases and colitis-associated colorectal cancer. Front. Immunol. 10, 1441. https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.01441
- Chen H., Sun H.M., Wu B., Sun T.Y., Han L.Z., Wang G., Shang Y.F., Yang S., Zhou D.S. (2023) Artesunate delays the dysfunction of age-related intestinal epithelial barrier by mitigating endoplasmic reticulum stress/unfolded protein response. Mech. Ageing Dev. 210, 111760. https://doi.org/10.1016/j.mad.2022.111760
- Tran L., Greenwood-Van Meerveld B. (2013) Age-associated remodeling of the intestinal epithelial barrier. J. Gerontol. A. Biol. Sci. Med. Sci. 68(9), 1045–1056. https://doi.org/10.1093/gerona/glt106
- Кононова С.В., Вахитов Т.Я., Кудрявцев И.В., Лазарева Н.М., Салль Т.С., Скалинская М.И., Бакулин И.Г., Хавкин А.И., Ситкин С.И. (2021) Цитокиновый профиль и иммунологический статус у пациентов с язвенным колитом. Вопр. практ. педиатрии. 16(6), 52–62. https://doi.org/10.20953/1817-7646-2021-6-52-62
- Landy J., Ronde E., English N., Clark S.K., Hart A.L., Knight S.C., Ciclitira P.J., Al-Hassi H.O. (2016) Tight junctions in inflammatory bowel diseases and inflammatory bowel disease associated colorectal cancer. W. J. Gastroenterol. 22(11), 3117–3126. https://doi.org/10.3748/wjg.v22.i11.3117
- Morsink M.A.J., Koch L.S., Hu S., Weersma R.K., van Goor H., Bourgonje A.R., Broersen K. (2024) Mucin-2 ER-to-Golgi transport mechanism identifies source of ER stress 1 in inflammatory bowel disease. Preprint. https://doi.org/10.1101/2024-05-13-593851
- Cornick S., Tawiah A., Chadee K. (2015) Roles and regulation of the mucus barrier in the gut. Tissue Barriers. 3(1–2), e982426. https://doi.org/10.4161/21688370-2014-982426
- Aspinall R. (2006) T cell development, ageing and Interleukin-7. Mech. Ageing Dev. 127(6), 572–578. https://doi.org/10.1016/j.mad.2006.01.016
- Watanabe M., Ueno Y., Yajima T., Iwao Y., Tsuchiya M., Ishikawa H., Aiso S., Hibi T., Ishii H. (1995) Interleukin 7 is produced by human intestinal epithelial cells and regulates the proliferation of intestinal mucosal lymphocytes. J. Clin. Invest. 95(6), 2945–2953. https://doi.org/10.1172/JCI118002
- Watanabe M., Ueno Y., Yamazaki M., Hibi T. (1999) Mucosal IL-7-mediated immune responses in chronic colitis-IL-7 transgenic mouse model. Immunol. Res. 20(3), 251–259. https://doi.org/10.1007/bf02790408
- Nguyen V., Mendelsohn A., Larrick J.W. (2017) Interleukin-7 and Immunosenescence. J. Immunol. Res. 2017, 4807853. https://doi.org/10.1155/2017/4807853
- Rios-Arce N.D., Collins F.L., Schepper J.D., Steury M.D., Raehtz S., Mallin H., Schoenherr D.T., Parameswaran N., McCabe L.R. (2017) Epithelial barrier function in gut-bone signaling. Adv. Exp. Med. Biol. 1033, 151–183. https://doi.org/10.1007/978-3-319-66653-2_8
- Zheng H., Zhang C., Wang Q., Feng S., Fang Y., Zhang S. (2022) The impact of aging on intestinal mucosal immune function and clinical applications. Front. Immunol. 13, 1029948. https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.1029948
- Ihara S., Hirata Y., Koike K. (2017) TGF-β in inflammatory bowel disease: a key regulator of immune cells, epithelium, and the intestinal microbiota. J. Gastroenterol. 52(7), 777–787. https://doi.org/10.1007/s00535-017-1350-1
- Čužić S., Antolić M., Ognjenović A., Stupin-Polančec D., Petrinić Grba A., Hrvačić B., Dominis Kramarić M., Musladin S., Požgaj L., Zlatar I., Polančec D., Aralica G., Banić M., Urek M., Mijandrušić Sinčić B., Čubranić A., Glojnarić I., Bosnar M., Eraković Haber V. (2021) Claudins: beyond tight junctions in human IBD and murine models. Front. Pharmacol. 12, 682614. https://doi.org/10.3389/fphar.2021.682614
- Вахитов Т.Я., Кудрявцев И.В., Салль Т.С., Лазарева Н.М., Кононова С.В., Хавкин А.И., Ситкин С.И. (2020) Субпопуляции Т-хелперов, ключевые цитокины и хемокины в патогенезе воспалительных заболеваний кишечника (часть 1). Вопр. практ. педиатрии. 15(6), 67–78. https://doi.org/10.20953/1817-7646-2020-6-67-78
- Nian Y., Minami K., Maenesono R., Iske J., Yang J., Azuma H., ElKhal A., Tullius S.G. (2019) Changes of T-cell immunity over a lifetime. Transplantation. 103(11), 2227–2233. https://doi.org/10.1097/TP.0000000000002786
- Kanai T., Nemoto Y., Kamada N., Totsuka T., Hisamatsu T., Watanabe M., Hibi T. (2009) Homeostatic (IL-7) and effector (IL-17) cytokines as distinct but complementary target for an optimal therapeutic strategy in inflammatory bowel disease. Curr. Opin. Gastroenterol. 25(4), 306–313. https://doi.org/10.1097/MOG.0b013e32832bc627
- Tapping R.I., Omueti K.O., Johnson C.M. (2007). Genetic polymorphisms within the human Toll-like receptor 2 subfamily. Biochem. Soc. Transact. 35(6), 1445–1448. https://doi.org/10.1042/bst0351445
- Lu Y., Li X., Liu S., Zhang Y., Zhang D. (2018) Toll-like receptors and inflammatory bowel disease. Front. Immunol. 9, 72. https://doi.org/10.3389/fimmu.2018.00072
- Loh G., Blaut M. (2012) Role of gut commensal bacteria in inflammatory bowel diseases. Gut Microbes. 3(6), 544–555. https://doi.org/10.4161/gmic22156
- Kim H.J., Kim H., Lee J.H., Hwangbo C. (2023) Toll-like receptor 4 (TLR4): new insight immune and aging. Immun. Ageing. 20(1), 67. https://doi.org/101186/s12979-023-00383-3
- Вахитов Т.Я., Кудрявцев И.В., Салль Т.С., Лазарева Н.М., Кононова С.В., Хавкин А.И., Ситкин С.И. (2021) Субпопуляции Т-хелперов, ключевые цитокины и хемокины в патогенезе воспалительных заболеваний кишечника (часть 2). Вопр. практ. педиатрии. 16(1), 41–51. DOI: https://doi.org/10.20953/1817-7646-2021-1-41-51
- Malik J.A., Zafar M.A., Lamba T., Nanda S., Khan M.A., Agrewala J.N. (2023) The impact of aging-induced gut microbiome dysbiosis on dendritic cells and lung diseases. Gut Microbes. 15(2), 2290643. https://doi.org/10.1080/19490976.2023.2290643
- Enss M.L., Cornberg M., Wagner S., Gebert A., Henrichs M., Eisenblätter R., Beil W., Kownatzki R., Hedrich H.J. (2000) Proinflammatory cytokines trigger MUC gene expression and mucin release in the intestinal cancer cell line LS180. Inflamm Res. 49(4), 162–169. https://doi.org/10.1007/s000110050576
- Hasnain S.Z., Tauro S., Das I., Tong H., Chen A.C., Jeffery P.L., McDonald V., Florin T.H., McGuckin M.A. (2013) IL-10 promotes production of intestinal mucus by suppressing protein misfolding and endoplasmic reticulum stress in goblet cells. Gastroenterology. 144(2), 357–368. https://doi.org/10.1053/j.gastro.2012.10043
- Garcia-Hernandez V., Quiros M., Nusrat A. (2017) Intestinal epithelial claudins: expression and regulation in homeostasis and inflammation. Ann. N.Y. Acad. Sci. 1397(1), 66–79. https://doi.org/10.1111/nyas.13360
- Chen D., Tang T.X., Deng H., Yang X.P., Tang Z.H. (2021) Interleukin-7 biology and its effects on immune cells: mediator of generation, differentiation, survival, and homeostasis. Front. Immunol. 12, 747324. https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.747324
- Kritikou E., Kuiper J., Kovanen P.T., Bot I. (2016) The impact of mast cells on cardiovascular diseases. Eur. J. Pharmacol. 778, 103–115. https://doi.org/10.1016/j.ejphar.2015.04.050
- Салль Т.С., Литвинова Е.А., Аржанова Е.Л., Кашина Т.А., Воронкина И.В., Кирик О.В., Ситкин С.И., Вахитов Т.Я. (2025) Сравнительный анализ основных факторов патогенеза воспалительных заболеваний кишечника в моделях in vitro и in vivo. Мед. акад. журн. 25(2). https://doi.org/10.17816/MAJ630556
- Sundin J., Öhman L., Simrén M. (2017) Understanding the gut microbiota in inflammatory and functional gastrointestinal diseases. Рsychosomatic Med. 79(8), 857–867. https://doi.org/10.1097/PSY.0000000000000470
Дополнительные файлы




